3S柱离心式快速总RNA/DNA植被试剂盒 K394/395

3S Quick Total RNA / DNA in One Miniprep Kit

CAT#

SIZE

PRICE(¥)

K394

20次

300

K395

50次

650

准备工作:
注意事项:
(a)RNase酶非常稳定,是导致RNA降解最主要的物质。它在一些极端的条件可以暂时失活,但限制因素去除后又迅速复性。用常规的高温高压蒸气灭菌方法和蛋白抑制剂不能使所有的RNase完全失活。RNase广泛存在于人的皮肤上,因此,制备RNA时必须戴手套。
(b)RNase的又一污染源是取液器。根据取液器制造商的要求对取液器进行处理。一般情况下采用用DEPC配制的70%乙醇擦洗取液器的内部和外部,基本达到要求。
1. 塑料制品、玻璃和金属物品的处理
(a)塑料制品:尽可能使用一次性无菌塑料制品。已标明RNase-free 的塑料制品,如没有开封使用过,通常没有必要再次处理。对于国产塑料制品,原则上处理后方可使用。处理方法如下:
(1)在玻璃烧杯中注入去离子水,加入DEPC使DEPC的终浓度为0.1%。注意:DEPC为剧毒物,活性很强,在通风柜中小心使用。
(2)将待处理的塑料制品放入一个可以高温灭菌的容器中,注入DEPC水溶液,使塑料制品的所有部分都浸泡到溶液中。

(3)℃下处理过夜。
(4)将DEPC水溶液小心倒到废液瓶中,用铝箔封住含用DEPC水处理过的塑料制品的烧杯,高温高压蒸气灭菌至少30分钟。
(5)用合适的温度(80-90℃)烘拷至干燥。置于干净处备用。
(b)玻璃和金属物品
(c)250°C烘烤3小时以上。
表1.试剂盒组成

Components and Size

K394
(20 Extractions)

K395
(50 Extractions)

3S Column
2.0 ml Collection tube
RLT Solution(a)
DES I Solution
DES II Solution
RPE Solution(b)
DEPC –H2O
Protocol

20根
20只
8 ml
5 ml
10 ml
10 ml
1 ml
1份

50根
50只
20 ml
25 ml
40 ml
40 ml
4 ml
1份

注意事项:
a.在收到试剂盒后,应将RLT Solution取出存放于4ºC下。
b.RPE Solution 在首次使用前,必须加入等体积的无水乙醇,无水乙醇必须是新开封的, 保证无RNase污染。
l  为获得最佳的结果,采用的样品数量一定要合适。可以参考表2。
l  细胞培养物、细菌菌体、酵母以及真菌菌丝应该在对数生长期收集,动物和植物样品应该取生长旺盛的幼嫩部位。

用户需自备的试剂和材料
无水乙醇,70%乙醇(DEPC-H2O配制) (植物和丝状真菌用),PBS(动物细胞用),液氮(植物和丝状真菌用),RNase-free的Eppendorf管和Tips。

实验操作步骤
动物细胞的总DNA/RNA 抽提
1.收集细胞
a. 悬浮培养细胞
依照表2提供的数据,300´g室温离心5分钟,彻底去上清,进行步骤2。
b. 单层培养细胞
单层培养细胞可以直接在培养瓶中进行裂解,也可以通过胰蛋白酶的消化收集细胞后再裂解。
蛋白酶消化细胞:倒掉培养基,用PBS洗涤细胞,然后用胰蛋白酶消化细胞。在细胞从培养瓶表面脱落以后,将细胞转移到离心管中,300´g离心5分钟,彻底去上清,进行步骤2。
直接在培养瓶中进行消化(直径可达10cm):完全倒掉培养基,进行步骤2。
2.裂解细胞
按下表加350ml RLT,用振荡器或枪头混匀。

Buffer RLT(ml)

细胞数

350

≦5×106

600

5×106 to 1×107

Buffer RLT(ml)

Dish diameter(cm)

350

< 6

600

6-10

3.加等体积的70%的乙醇,用枪头混匀。
4.将3S柱放到一个2ml 的收集管中,将700ml 样品(样品中如果有沉淀,应将沉淀一起加到3S柱中)加到3S柱中,室温10000´g高速离心1分钟,倒去收集管中的废液,将3S柱放到同一收集管中。
5.加500ml RPE Solution加到柱子中,室温下高速离心1分钟;

如果需要得到所有的DNA和RNA,执行步骤6-8:

6.重复步骤5一次。
7.倒掉收集管中的废液,将柱子放入同一个收集管, 室温下高速离心1分钟。
8.将柱子放到一个无RNase污染的Eppendorf 管中,取100ml DEPC-H2O加到柱子中膜的中央,42℃水浴保温2分钟,室温下高速离心1分钟。 洗脱得到的为总RNA和DNA混合样品。可立即使用,也可存放在-20℃或-70℃备用。

如果需要分别得到DNA和RNA,执行步骤9-13:

9.取出柱子,放入干净的(最好是无RNase污染的Eppendorf 管)1.5ml收集管中,加入50ml DES I液,让离心管盖子开着,42℃水浴保温2分钟;盖上离心管盖,室温下高速离心1分钟。收集管中的样品即为基因组DNA注意:通常情况下从本步骤得到的DNA的量已足够用于PCR反应,Southern杂交等实验。
10.将柱子放回2ml收集管,在柱子中加入450ml DES II溶液,42℃水浴保温2分钟,室温下高速离心1分钟。根据需要是否保留洗脱液。

注意:洗脱液中仍含有部分DNA,它可以与步骤6中的DNA样品一起按下发予以合并回收
(1)并步骤6,7的洗脱液,加入250ml无水乙醇,混匀,转移到一根新的3S柱子中,柱子放入2ml收集管中,室温放置2分钟。
(2)用台式离心机,室温下高速离心1分钟。
(3)取下柱子,弃去管中的废液,放回柱子,在柱子中加入500ml RPE Solution,室温下高速离心1分钟。
(4)弃去收集管中的废液,将柱子放入同一个收集管,室温下高速离心1分钟除去残留的RPE液。
(5)取出柱子,放入干净的(最好是RNase污染的Eppendorf 管)1.5ml收集管中,在柱子膜的中央加入30-50ml水,让离心管盖子开着,42℃水浴保温2分钟;盖上离心管盖,室温下高速离心1分钟。收集管中的样品即为基因组DNA。洗脱的DNA可立即使用,也可以-20℃或-70℃保存备用。如需要保证DNA的完整性,短期也可以4℃保存。
11.将柱子放回2ml收集管, 加500ml RPE Solution加到柱子中,高速离心1分钟。

12.倒掉收集管中的废液,将柱子放入同一个收集管, 室温高速离心2分钟以除去残留的RPE Solution。
13.将柱子放到一个无RNase污染的Eppendorf 管中,取30-50ml DEPC-H2O加到柱子中膜的中央,42℃水浴保温2分钟,室温下高速离心1分钟。 洗脱得到的RNA可立即使用,也可存放在-20℃或-70℃备用。

细菌总DNA/RNA的抽提
1.   将适量的指数生长期细菌(最多可达1×109)4℃下5,000´g离心3-5分钟,彻底弃上清培养基。
2.   加100ml含溶菌酶的TE,用振荡器混匀,对于格兰氏阳性和格兰氏阴性菌酶解时间的要求是不一样的,详见下表。

 

TE中溶菌酶浓度

室温下酶解时间

格兰氏阴性菌

400mg/ml

3-5分钟

格兰氏阳性菌

3 mg/ml

5-10分钟

3.   加350ml RLT Solution,剧烈振荡,以保证细菌的充分裂解,如果有不溶物的存在,高速离心两分钟,取上清液进行下一步试验。
4.加250ml无水乙醇到裂解液中,用枪头混匀,注意即使出现沉淀也不要离心。
5.以下步骤同动物细胞的总DNA/RNA 抽提步骤5-10。

植物细胞、组织和丝状真菌总DNA/RNA的抽提
1.样品在液氮下碾磨,在液氮未挥发光前粉末转移到Eppendoff管中,保证样品未融解。
2.加450ml RLT Solution到样品中,样品最多100mg。剧烈振荡混匀。
在56℃下放置1-3分钟,有利于样品的裂解,但淀粉含量高的样品不能在高温下裂解,否则会出现团状物。
3.加0.5倍体积的无水乙醇,用枪头混匀。
4.将3S柱放到一个2ml 的收集管中,将700ml样品(样品中如果有沉淀,应将沉淀一起加到3S柱中)加到3S柱中,室温,10000´g高速离心1分钟。

5.以下步骤同动物细胞的总DNA/RNA抽提步骤5-13。如果对RNA的要求更高,可以采用下面总RNA的纯化的方法对RNA进行纯化。

总RNA的纯化
1.  将抽提得到的RNA样品用DEPC-H2O调节到100ml,加350ml RLT液,充分混匀。
2.  加250ml无水乙醇,用枪头混匀,注意即使出现沉淀也不要离心。
3.  将3S柱放入2ml收集管中,将700ml样品连同沉淀物一起上到3S柱中,高速离心1分钟,倒掉收集管中的液体,将柱子放入同一个收集管。
4.  加500ml RPE Solution加到柱子中,室温下10000´g高速离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将柱子放入同一个收集管。
5.  加500ml RPE Solution加到柱子中,室温,10000´g高速离心1分钟。
6.  倒掉收集管中的废液,将柱子放入同一个收集管, 室温高速离心2分钟以除去残留的RPE Solution。
7.  将柱子放到一个无RNase污染的Eppendorf 管中,取30-50ml DEPC-H2O加到柱子膜的中央,50℃下放置2分钟(此温度下有利于RNA的洗脱),高速离心1分钟。

RNA样品的储存,定量和纯度的确定
储存:洗脱得到的RNA可立即使用,也可存放在-20℃或-70℃一年以上。不得反复冻融。
定量:样品用RNase-free水稀释,测定A260,按1 A260 = 40 mg/ml计算产率。注意稀释后样品的吸收值必须大于0.15,否则不准确。
纯度:测定A260/280. 该比值受稀释样品用溶液的pH影响。如需要准确的比值,用10 mM Tris-HCl pH7.5 稀释样品。

纯化过程中可能出现的问题及解决方法:


现象

原因

解决方法

加入裂解液后非常粘稠,样品转移比较困难

首次离心柱子堵塞

DNA的产率很低

 

RNA的产率很低

 

RNA发生降解

 

 

 

DNA中微量RNA污染

RNA中微量DNA污染

 

PCR扩增无产物

 

 

A260/A280过低

样品用量太多

 

样品太多, 或裂解不完全。
DNA仍在柱子上

样品太少

起始样品太多,或裂解不完全
RNA仍在柱子上

样品存放时间太长
裂解或匀浆不完全
操作不规范
裂解液中没有加入b-ME

DNA洗脱温度过高

 

PCR条件不理想
DNA用量过大
DNA样品只能感的部分组分抑制反应

提高RLT的用量,用多根3S柱纯化同一个样品

 

提高离心力,或降低样品用量或提高提高RLT的用量

洗脱DNA时,将DES I溶液预热,同时将保温时间延长到5分钟
增加样品的用量

降低样品用量或提高提高RLT的用量

将DEPC-H2O预热到50°C,再在50°下保温2分钟

用新样品
变匀浆方式,降低样品用量
严格按照要求执行
如不肯定,请再加入b-ME,稍过量的b-ME不会影响RNA的纯化

室温洗脱DNA, 或用DNase free 的RNase A处理
用DNase I(RNase-free)处理

 

优化反应条件
减少用量,特别是用Pfu DNA聚合酶扩增时要特别注意
用水稀释,或减少用量,或酚抽提,或3S柱子2次纯化

测定时用10 mM Tris-HCl pH7.5 稀释样品,比色杯用0.1M NaOH, 1 mM EDTA洗,再用RNase-free水处理