
化学显色蛋白质印迹转移系统 K03M/04R
Visual AP Western Blotting System
CAT# |
SIZE |
PRICE(¥) |
K03M |
1套1000cm2 |
850 |
K04R |
1套1000cm2 |
850 |
特别提醒:
本系统仅仅适用于硝酸纤维膜(Nitrocelluolose)和PVDF膜 使用前请仔细阅读操作方法!! 针对目的蛋白质的第一抗体必须是兔 (Rabbit)或鼠产生的。 |
试剂盒组成:
Components and Size |
K03M (1000cm2) |
K04R |
保存温度 |
Anti-Rabbit IgG AP conjugated ( a) |
------ |
0.05ml |
-20C |
Anti-Rabbit IgG AP conjugated ( a) |
------ |
0.05ml |
-20C |
注:
(a)抗体应变免反复冻融。蛋白质免疫印迹抗体的稀释度参见抗体管标签,一般为1:500-2000稀释。
(b)NBT和BCIP-20C保存,稳定期一年以上。不推荐将两者混合或与AP Substrate Buffer混合存放。
(c)Blocking Solution VW内含防腐剂,但仍要注意防霉和长菌。
(d)本试剂盒提供的溶液和抗体可以用于1000cm2膜Western 蛋白质检测。
用途:
Western Blotting 实验检测目的蛋白质。要求:针对目的蛋白质的第一抗体必须是兔(Rabbit)或鼠产生的。广谱第二抗体上标有的碱性磷酸酶(AP)水解BCIP,形成的产物在NBT的氧化下形成蓝灰色沉淀,从而判定目的蛋白质的位置和相对的表达量。与化学发光方法相比,该法操作简单,不需要显影和暴光设备。
用户需要自备的试剂和材料:
一抗(兔或鼠产生的抗体),PVDF膜或硝酸纤维膜,Western Blot(蛋白质转移试剂和设备,预染蛋白质分子量标准(非必须),TTBS等
TTBS: 0.1% Tween 20, 100 mM Tris-HCl, pH7.5, 0.9% NaCl (灭菌后室温保存)。
操作步骤:
1. 参考有关方法用SDS-PAGE电泳分离蛋白质。
2. 参考有关方法将PAGE胶中的蛋白质转移到PVDF膜或硝酸纤维膜上。注意: PVDF膜在转移前需要用100%甲醇处理1-2秒,然后用电转缓冲浸泡10分钟左右后使用。为避免混淆样品上下和前后次序,通常在膜的左上角剪去一小块,对应与第一个样品的最上端。
4. 倒出杂交袋中的Blocking Solution,加入稀释好的一抗(根据抗体的滴度和需要的体积用Blocking Solution稀释一抗。如果用杂交袋,10x10cm膜5ml Blocking Solution 就可以了。如果使用Tip盒子,需要提高抗体的体积,使溶液充分覆盖膜表面。封袋或盖上盖子,室温保温60分钟。将杂交袋或盒子放在旋转振荡器上,不停震荡。如没有振荡器,必须间或混匀,尽可能除去膜表面的气泡。
5. 倒出一抗(4C保存(<2天),可以重复用一到两次),将膜用镊子转移到干净的Tip塑料盒子中,用50ml TTBS洗4次,每次10分钟。
6. 将膜转移到一个新的杂交袋中,加入用稀释的用Blocking Soluton稀释二抗(Anti-Rabbit IgG AP conjugated或Anti-Mouse IgG AP conjugated)(10x10cm膜 5ml Blocking Solution 就可以了。)本系统提供的抗体稀释度为1:500,使用时取10ul抗体,加入5ml Blocking Solution,混匀后使用。室温振荡保温60分钟。如没有振荡器,必须间或混匀,尽可能除去膜表面的气泡。
7. 倒出二抗(4C保存(<2天),可以重复用一到两次),用镊子将膜转移到干净的Tip塑料盒子中,用50ml TTBS洗4次,每次10分钟。
8. 配置AP显色底物溶液:5 ml AP Substrate Buffer + 50ml NBT Solution + 50 ml BCIP Solution, 混匀。该底物必须在2小时内使用。
9. 将步骤7中的TTBS弃去,将膜转移到杂交袋中,加入步骤8中配置的AP底物溶液。让溶液覆盖所有膜面,除去膜表面所有的气泡。室温(或37度)保温10-30分钟左右。注意观察条带的出现,适时终止反应。
10. 终止:取出膜,将膜用蒸馏水冲洗。
11. 膜的保存:室温凉干后,放入干净的自封袋中短暂保存。永久保存需拍照或扫描存入计算机。
常见的几个事项:
1.PVDF比硝酸纤维膜给出较强的信号。选高质量的PVDF膜。尽可能不用Nylon膜。
2.与抗体结合以后,要保证膜处于湿润状态,否则本底较高。
3.没有信号的原因:有些抗体不识别变性抗原,有时需要考虑电泳过程对蛋白质结构的影响;样品中无待测蛋白质或含量过低;一抗滴度不合适;
4.本底过高原因:转移膜封闭不充分;与抗体保育后洗得不彻底;膜在处理过程中过干等。



